垂直輪生物反應器系統(tǒng)助力iPSC衍生胰島全流程3D懸浮分化
瀏覽次數(shù):18 發(fā)布日期:2026-3-23
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摘要
本研究利用垂直輪生物反應器,成功將iPSC有效分化為功能性胰島(SC-islets)。這些胰島在細胞組成、代謝功能和轉(zhuǎn)錄成熟度上與成人供體胰島相似,且在葡萄糖刺激下能有效分泌胰島素。單細胞分析顯示無異質(zhì)性,移植后小鼠血糖穩(wěn)態(tài)恢復,移植物功能成熟。該技術有助于規(guī)模化生產(chǎn)臨床級別的胰島,為糖尿病治療提供新途徑。
PART 01 研究背景
糖尿病是一種全球性健康問題,影響著數(shù)億人的生活。傳統(tǒng)的治療方法,如胰島素注射和生活方式調(diào)整,雖然能夠控制血糖水平,但無法根治糖尿病。干細胞療法,尤其是從多能干細胞中分化出的胰島,為糖尿病的治療提供了新的思路。這些胰島能夠模擬人體內(nèi)的胰島功能,有望恢復患者的胰島素分泌能力。
PART 02 研究方法
研究團隊采用了垂直輪生物反應器系統(tǒng),這是一種高度可控和動態(tài)的細胞培養(yǎng)環(huán)境,能夠促進細胞的生長和定向分化。該系統(tǒng)通過準確控制氧氣、營養(yǎng)物質(zhì)水平、pH值和機械刺激等參數(shù),模擬胰腺的動態(tài)和異質(zhì)性微環(huán)境,從而促進細胞的分化和成熟。
研究中使用的人類誘導多能干細胞(iPSCs)來源于健康供體的外周血單個核細胞(PBMCs)。這些iPSCs在PBS垂直輪生物反應器中進行擴增,并在反應器中通過六個階段分化方案(S1至S6)分化為胰島。每個階段都通過特定的生長因子和抑制劑進行調(diào)控,以確保細胞的有效分化。(詳細方案見原文章:Complete Suspension Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells into Pancreatic Islets Using Vertical Wheel? Bioreactors。doi.org/10.1101/2023.08.09.552676)
PART 03 實驗結(jié)果
01 人iPSC可在垂直輪式生物反應器中定向分化均一的SC-胰島細胞簇
在0.5L垂直輪生物反應器中,iPSCs的擴增達到了9.971億個細胞,平均簇大小為250微米。通過完整的懸浮分化方案,iPSCs在垂直輪生物反應器中有效分化為胰島,最終產(chǎn)量達到了1.35億個SC-islet細胞。
圖1. 垂直輪生物反應器中iPSC衍生胰島的完全懸浮培養(yǎng)分化與特性鑒定
a. 27天六階段懸浮培養(yǎng)分化協(xié)議的概覽,使用垂直輪生物反應器,每個階段都有質(zhì)量控制放行參數(shù)和特定階段的生長因子。階段1-7分別稱為:DES(確定性內(nèi)胚層)、PGT(原始腸管)、PFT(后前腸)、PPS(胰腺祖細胞)、PEPS(胰腺內(nèi)分泌祖細胞階段)、bCS(β細胞階段)。
b. 在垂直輪生物反應器中擴增的iPSC聚集體的相差圖。比例尺為1毫米。插圖顯示了在擴增周期中培養(yǎng)的0.1L 反應器中的iPSCs。照片顯示了從第1天到第27天每個分化階段結(jié)束時在垂直輪生物反應器容器底部聚集的細胞團。
c. SC-胰島的相差和明場圖像,用于形態(tài)學觀察和二硫腙染色(紅色)。比例尺分別為250微米和800微米。
d. S6培養(yǎng)期間SC-胰島的免疫組化圖像。比例尺為50微米。
e. 胰島激素細胞(胰島素、胰高血糖素和生長抑素)的代表性流式細胞術圖。
f. 在0.1L和0.5L生物反應器容器中SC-胰島(S6)產(chǎn)量的量化。
g. 從0.1L和0.5L生物反應器容器中生成的SC-胰島簇大小的量化。
h. 細胞在S1-S6胰島分化階段經(jīng)歷內(nèi)分泌分化及可能發(fā)生的細胞損失的圖形表示。整個圖表的各部分代表每個階段的總細胞損失。
g. SC-胰島簇的免疫組化圖像和代表性流式細胞術,用于檢測S6期間非靶向SC-腸嗜鉻細胞(EC)和增殖的Ki-67陽性細胞的比例。
02 對細胞簇進行細胞組成分析證實,iPSC可有效分化為胰腺譜系細胞
生成的SC-islets顯示出豐富的內(nèi)分泌細胞組成,約63%的細胞為CPEP+NKX6.1+ISL1+,顯示出功能性成熟,能夠在體外和移植后對葡萄糖刺激的胰島素分泌反應(約5倍)。

圖2. 懸浮培養(yǎng)分化過程中SC-胰島的階段特異性細胞組成特征
a. 確定性內(nèi)胚層(階段1)簇的免疫組化圖像及內(nèi)胚層細胞比例的代表性流式細胞術圖。比例尺為100微米。
b. 階段4細胞簇的明場和免疫組化圖像以及胰腺祖細胞比例的代表性流式細胞術圖。比例尺為50微米。
c. 人類供體胰島和完全分化的SC-胰島簇的明場圖像。比例尺為500微米。
d. S6分化后胰島細胞比例的代表性流式細胞術圖。通過流式細胞術對CPEP、NKX6.1和CHGA進行定量。
e. 分化后的S6w1簇的免疫組化圖像。比例尺為50微米。對S6w1時免疫染色簇的CPEP、NKX6.1、PDX1和CHGA進行定量。
f. 分化后的S6w1簇的免疫組化圖像以及成熟(UCN3)和未分化(OCT4)標志物比例的代表性流式細胞術圖。比例尺為50微米。
03 高維單細胞數(shù)據(jù)的動態(tài)可視化解析揭示了 SC-祖細胞 (S4) 和 SC-胰島 (S6) 的細胞異質(zhì)性和表型多樣性
通過單細胞質(zhì)量流式細胞術和降維分析,研究團隊在S4和S6階段確認了細胞的理想成熟度?偟膩碚f,來自 S4 和 S6 細胞的 FlowSOM 熱圖描繪了細胞群的分布及其胰腺祖細胞、胰腺內(nèi)分泌祖細胞和激素分泌標志物的表達水平。值得注意的是,自組織映射中亞群的最小擴散反映了細胞組成中有限的細胞異質(zhì)性。(詳細分析見原文)
圖3. SC-胰腺祖細胞中細胞異質(zhì)性的單細胞viSNE和降維可視化
a. 實驗設計概覽,用于對S4細胞進行單細胞質(zhì)量流式細胞術和細胞異質(zhì)性的降維分析。
b.第4階段50,000個祖細胞的單細胞viSNE圖,顯示PDX1、NKX6.1和CHGA標記物,與未分化的iPSC對照細胞對比。顏色梯度表示viSNE島嶼中細胞密度,從高(紅色)到低(藍色)。
c. S4細胞簇的免疫組化圖像。比例尺為50微米。
d. S4胰腺祖細胞的流式細胞術的降維可視化(FlowSOM),針對NKX6.1、PDX1、GP2和CHGA,與供體原代胰島細胞和未分化的iPSC對照細胞對比。顏色梯度表示內(nèi)分泌譜系軌跡中細胞密度,從高(紅色)到低(藍色)。
e. S4細胞中PDX1、NKX6.1和CHGA的單細胞分辨率的自組織星形圖。 自組織圖的最小生成樹顯示基于蛋白表達水平的樣本無監(jiān)督聚類(右側(cè))。熱圖比例尺顯示細胞簇中每個蛋白標記的表達水平(左側(cè))。
圖4. SC-胰島細胞中細胞異質(zhì)性的單細胞viSNE和降維可視化
a. 實驗設計概覽,用于對SC-胰島細胞進行單細胞質(zhì)量流式細胞術和細胞異質(zhì)性的降維分析。
b. 單細胞viSNE圖顯示了50,000個S6w1細胞在NKX6.1、CHGA以及胰島激素INS、GCG和SST的表達情況,并與初級供體胰島細胞和未分化的iPSC對照細胞進行了比較。顏色漸變表示viSNE島嶼中細胞的密度,從高密度(紅色)到低密度(藍色)。
c. S6w1簇的免疫組織化學染色。標尺,50 μm。
d. S6w1島嶼中CPEP、NKX6.1和ISL1的viSNE表示及定量分析,與iPSC對照組進行比較。顏色漸變表示viSNE島嶼中細胞的密度,從高密度(紅色)到低密度(藍色)。
e. S6w1細胞CPEP和NKX6.1的流式細胞術維度縮減可視化(FlowSOM),與供體初級胰島細胞和未分化的iPSC對照細胞進行比較。顏色漸變表示內(nèi)分泌譜系軌跡中細胞的密度,從高密度(紅色)到低密度(藍色)。
f. 單細胞分辨率下的自組織星形圖,顯示CPEP和NKX6.1標記物。自組織映射的最小生成樹展示了基于蛋白質(zhì)表達水平的樣本無監(jiān)督聚類(右)。熱圖尺度顯示了每個蛋白標記在細胞簇中的表達(左)。
04 懸浮培養(yǎng)的SC-胰島在體外實現(xiàn)轉(zhuǎn)錄組學上的成熟
通過TaqMan低密度基因陣列(TLDA)卡進行的內(nèi)分泌轉(zhuǎn)錄組分析顯示,SC-islets的轉(zhuǎn)錄組與成人供體胰島相似,表明SC-islets在轉(zhuǎn)錄水平上已經(jīng)成熟。
圖5. 干細胞衍生胰島的轉(zhuǎn)錄成熟
a. 熱圖展示SC-胰島與原代胰島及未分化iPSCs相比的胰島分化基因簇。
b. 實時表達分析,顯示從iPSCs分化至S6階段過程中上調(diào)的選定基因。
c. 火山圖展示SC-胰島與未分化iPSCs對比,以顯示體外上調(diào)和下調(diào)的關鍵基因集。
d. 關鍵胰島特異性基因集隨分化階段進展上調(diào)的氣泡圖(左側(cè))。熱圖顏色比例尺(右上角)顯示基因表達水平,氣泡大小指標(右下角)代表分化各階段每種轉(zhuǎn)錄本的密度。
e. 循環(huán)聚類熱圖展示從階段0、1、3、4、5和6與原代供體胰島相比,所有與胰腺分化相關的基因的平均表達水平,每個階段n=2。熱圖比例尺顯示基因表達水平(>0表示上調(diào),<0表示下調(diào))。
f. 小提琴圖展示S6w1細胞的SC-胰島與成人人類胰島及未成熟S6w0細胞相比的成熟β細胞特征。
g. 小提琴圖展示S6w1細胞從起源時間起與成熟β細胞標志性過程相關的基因表達水平。
05 懸浮培養(yǎng)的SC-胰島具備功能性胰島素分泌機制
SC-islets在靜態(tài)和動態(tài)葡萄糖響應性胰島素釋放實驗中顯示出成熟的胰島素分泌能力。在高葡萄糖(16.7 mM)和KCl去極化條件下,S6w1胰島顯示出明顯的胰島素分泌增加。
圖6. 干細胞衍生胰島的功能表型
a. 對11 mM(G11)、2.8 mM(G3)、16.7 mM(G17)葡萄糖、10 ng/ml艾塞那肽(EX4)和35 mM KCl的動態(tài)灌流的胰島素分泌反應。分泌追蹤結(jié)果根據(jù)總DNA含量進行標準化(n=3),來自兩個獨立分化批次復制的五十個S6w1簇。
b. S6w1簇在靜態(tài)孵育中對不同葡萄糖濃度從G3到G17和KCl的胰島素分泌反應與成人供體胰島相比。結(jié)果根據(jù)每個用于釋放實驗的胰島進行標準化,n=5。成人供體胰島的技術復制平均分泌,n=2。
c. 熱圖展示S6w1細胞與未成熟S6w0細胞相比,與成熟β細胞標志性過程、葡萄糖代謝和功能相關的基因表達譜。
d-e. 小提琴圖展示負責胰島素分泌、氧化磷酸化、糖酵解和TCA循環(huán)途徑的基因的平均表達。
06 人胰腺祖細胞與 SC-胰島移植后可有效逆轉(zhuǎn)小鼠高血糖癥
將S4和S6w1細胞移植到鏈脲佐菌素(STZ)誘導的糖尿病免疫缺陷SCID beige小鼠的腎包膜下,結(jié)果顯示S6w1移植小鼠在移植后42天內(nèi)血糖水平迅速下降,并在105天內(nèi)穩(wěn)定控制血糖,明顯優(yōu)于S4細胞。
圖7. 干細胞衍生的胰腺祖細胞和胰島簇的體內(nèi)移植
a. 實驗概覽和時間線,展示在小鼠中移植后3-4個月對S4和S6細胞的移植物評估。
b. 移植前SC-S4/S6細胞組成的代表性流式細胞術確認。
c. 移植后3個月,從S4w0和S6w1移植小鼠中收獲的腎臟照片。代表性圖像展示了移植后3個月小鼠組織中腎包膜下內(nèi)分泌移植物區(qū)域的宏觀組織學(蘇木精和伊紅染色)和免疫組化。比例尺分別為1毫米和200-300微米。
d. 量化S4w0與S6w1細胞在移植后150天內(nèi)糾正小鼠高血糖的體內(nèi)效果。在多個時間點進行比較。n=13-19只小鼠。
e. 通過曲線下面積(AUC)量化,展示S4w0和S6w1細胞在移植后1-3個月內(nèi)有效的降血糖效果。n=4-19。
f-g. S4w0和S6w1移植小鼠在移植后2、3、4個月的體內(nèi)葡萄糖刺激的人類C肽分泌。所有數(shù)據(jù)以均值±標準誤(mean±sem)表示,n=6。
h-i. 量化S4w0和S6w1移植物小鼠在移植后2、3、4個月受損葡萄糖耐受的體內(nèi)功能效果。條形圖表示曲線下面積,展示葡萄糖耐受和移植物功能的潛在效果。
j. 移植后3個月成熟期,從S4w0和S6w1植入小鼠收獲的移植物組織的免疫組化。比例尺為50微米。
07 移植物來源的SC-胰島單細胞顯示內(nèi)分泌譜系優(yōu)化,轉(zhuǎn)錄成熟度與功能活性明顯提升
圖8. 移植后和成熟期收獲的移植物細胞特征:
a. 移植成熟和收獲的SC-胰島細胞的細胞組成、轉(zhuǎn)錄組和功能特征的實驗概覽。
b. 基于流式細胞術的移植物細胞組成的餅圖量化和展示,用于分類多種胰腺細胞群體。下方的熱圖顯示了整個移植物細胞組成的部分整體表示。n=4-7只小鼠。
c. 移植前后非靶向SC-EC細胞特征和定量的代表性流式細胞術圖。
d. SC-胰島植入移植物收獲組織與移植前S6w1胰島(3個獨立分化準備的平均值)和未分化iPSCs(3個iPSC系的平均值)相比的胰島分化和成熟基因簇的熱圖投影。右上角的顏色比例尺表示基因上調(diào)(紅色;>0)和下調(diào)(藍色;<0)。移植物評估來自n=5只小鼠。SC-胰島或iPSC數(shù)據(jù)集表示為n=3個獨立復制的平均值。
e. 火山圖展示移植后3個月內(nèi)分泌成熟的程度,與移植前S6w1細胞相比,關鍵的β細胞、α細胞和內(nèi)分泌成熟相關基因上調(diào)。
f. 移植后3個月收獲的腎臟中切除的S6w1移植物圖像。在AggreWell400TM板中重新聚集和形成偽胰島的移植物收獲的單分散細胞。重新聚集的移植物衍生的SC-胰島簇的代表性圖像。比例尺為100微米。
g. 體外葡萄糖刺激的人類C肽分泌(左側(cè))和從一百萬移植物收獲細胞重新聚集形成胰島樣簇的總?cè)祟怌肽含量的量化。
PART 04 結(jié)論
本研究成功開發(fā)了一種生成SC-islets的全階段完全懸浮分化培養(yǎng)方案。利用垂直輪生物反應器技術使生成iPSC衍生的人類胰島效率更高。這些胰島在體外和體內(nèi)均顯示出與成人供體胰島相似的功能成熟度和轉(zhuǎn)錄組特征。垂直輪生物反應器系統(tǒng)不僅提高了胰島的產(chǎn)量和功能成熟度,還減少了細胞損失和異質(zhì)性,為未來的糖尿病細胞療法提供了有力的技術支持。
PART 05 未來展望
這項研究為糖尿病的治療提供了新的希望。未來的工作將進一步優(yōu)化這些協(xié)議,以實現(xiàn)流體動力學的改進、減少機械剪切應力,并探索去除不需要的非目標細胞群體的方法。最終,這項技術有望加速自體干細胞衍生的胰島細胞療法的開發(fā),為所有形式的糖尿病患者提供無需抗排斥藥物的治療方案。
PBS垂直輪式生物反應器的主要特點:
✔低剪切、均勻混合的水動力學環(huán)境
✔0.1L-80L規(guī)格,滿足客戶從早研、臨床至商業(yè)化生產(chǎn)規(guī)模不同階段的需求
✔實現(xiàn)真正可靠的放大性
✔GMP版本就緒
PBS反應器適用的3D懸浮培養(yǎng)場景(包含但不限于):
➡ iPSC(以聚集體形式生長或基于微載體培養(yǎng))
➡ iPSC-islets (iPSC分化全流程)
➡ iT/ 原代CAR-T細胞
➡ iNK /原代NK單細胞
➡ 原代 MSC/iMSC
➡ 類器官(iPSC來源神經(jīng)和心臟類器官等)
➡ 人腫瘤細胞系
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